Coronavirus SARS-CoV-2: Guida per la pulizia ambientale in strutture non sanitarie

Marzo 3, 2020

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L’agente causale coinvolto negli attuali focolai della malattia di coronavirus 2019 (COVID-19), SARS-CoV-2 (genere: Betacoronavirus), appartiene alla famiglia dei Coronaviridae , una grande famiglia di virus RNA a singolo filamento avvolto, a senso positivo .

I coronavirus sono trasmessi nella maggior parte dei casi attraverso grandi goccioline respiratorie e trasmissione dei contatti, ma sono state proposte anche altre modalità di trasmissione.

Il tempo di sopravvivenza e le condizioni che influenzano la vitalità della SARS-CoV-2 nell’ambiente sono attualmente sconosciuti.

Persistenza del coronavirus su superfici inanimate

Su diversi tipi di materiali può rimanere contagioso da 2 ore a 9 giorni. Una temperatura più elevata come 30 ° C o 40 ° C ha ridotto la durata della persistenza di MERS-CoV, TGEV e MHV altamente patogeni.

Tuttavia , a 4 ° C la persistenza di TGEV e MHV può essere aumentata a ≥ 28 giorni.

Pochi dati comparativi ottenuti con SARS-CoV indicano che la persistenza era più lunga con inoculi più alti ( Tabella I ).

Inoltre, è stato dimostrato a temperatura ambiente che HCoV-229E persiste meglio al 50% rispetto al 30% di umidità relativa – [ Ijaz, MK, Brunner, AH, Sattar, SA, Nair, RC e Johnson-Lussenburg, CM Survival caratteristiche di coronavirus umano aereo 229E. J Gen Virol. 1985; 66: 2743–2748 ].

Tabella I – Persistenza di coronavirus su diversi tipi di superfici inanimate

Tipo di superficie	Virus	Filtrare / isolare	Inoculo (titolo virale)	Temp.	Persistenza	Riferimento
Acciaio	MERS	Isolate HCoV-EMC/2012	10⁵	20 ° C 30 ° C	48 h 8–24 h	[21]
TGEV	Sconosciuto	10⁶	4 ° C 20 ° C 40 ° C	≥ 28 d 3–28 d 4–96 h	[22]
MHV	Sconosciuto	10⁶	4 ° C 20 ° C 40 ° C	≥ 28 d 4–28 d 4–96 h	[22]
HCoV	Varietà 229E	10³	21°C	5 d	[23]
alluminio	HCoV	Varietà 229E e OC43	5 x 10³	21°C	2–8 h	[24]
Metallo	SARS	Varietà P9	10⁵	RT	5 d	[25]
Legna	SARS	Varietà P9	10⁵	RT	4 d	[25]
Carta	SARS	Varietà P9	10⁵	RT	4–5 d	[25]
SARS	Varietà GVU6109	10⁶ 10⁵ 10⁴	RT	24 h 3 h <5 min	[26]
Bicchiere	SARS	Varietà P9	10⁵	RT	4 d	[25]
HCoV	Varietà 229E	10³	21°C	5 d	[23]
Plastica	SARS	Varietà HKU39849	10⁵	22°-25°C	≤ 5 d	[27]
MERS	Isolate HCoV-EMC/2012	10⁵	20 ° C 30 ° C	48 h 8–24 h	[21]
SARS	Varietà P9	10⁵	RT	4 d	[25]
SARS	Varietà FFM1	10⁷	RT	6–9 d	[28]
HCoV	Varietà 229E	10⁷	RT	2–6 d	[28]
PVC	HCoV	Varietà 229E	10³	21°C	5 d	[23]
Gomma siliconica	HCoV	Varietà 229E	10³	21°C	5 d	[23]
Guanto chirurgico (lattice)	HCoV	Varietà 229E e OC43	5 x 10³	21°C	≤ 8 h	[24]
Abito monouso	SARS	Varietà GVU6109	10⁶ 10⁵ 10⁴	RT	2 d 24 h 1 h	[26]
Ceramica	HCoV	Varietà 229E	10³	21°C	5 d	[23]
Teflon	HCoV	Varietà 229E	10³	21°C	5 d	[23]

MERS = Sindrome respiratoria mediorientale; HCoV = coronavirus umano; TGEV = virus della gastroenterite trasmissibile; MHV = virus dell’epatite di topo; SARS = Sindrome respiratoria acuta grave; RT = temperatura ambiente.

Opzioni di pulizia ambientale

A causa della potenziale sopravvivenza del virus nell’ambiente per diversi giorni, i locali e le aree potenzialmente contaminati con SARS-CoV-2 devono essere puliti prima del loro riutilizzo, utilizzando prodotti contenenti agenti antimicrobici noti per essere efficaci contro i coronavirus.

Anche se mancano prove specifiche della loro efficacia contro SARS-CoV-2, la pulizia con acqua e detergenti domestici e l’uso di prodotti disinfettanti comuni dovrebbero essere sufficienti per la pulizia precauzionale generale.

Un recente studio che ha confrontato diversi germicidi sanitari [4] ha scoperto che quelli con una concentrazione di etanolo al 70% hanno avuto un effetto più forte su due diversi coronavirus (virus dell’epatite di topo e virus della gastroenterite trasmissibile) dopo un minuto di contatto su superfici dure rispetto allo 0,06% di sodio ipoclorito.

I test effettuati utilizzando SARS-CoV hanno mostrato che l’ipoclorito di sodio è efficace a una concentrazione dello 0,05 e 0,1% dopo cinque minuti quando viene miscelato con una soluzione contenente SARS-CoV [5].

Risultati simili sono stati ottenuti utilizzando detergenti domestici contenenti sodio lauriletere solfato, alchil poliglicosidi e dietanolamide dell’acido coco-grasso [5].

Tabella 2. Agenti antimicrobici efficaci contro diversi coronavirus: coronavirus umano 229E (HCoV-229E), virus dell’epatite di topo (MHV-2 e MHV-N), coronavirus canino (CCV), virus della gastroenterite trasmissibile (TGEV) e sindrome respiratoria acuta grave coronavirus (SARS-CoV) 1

Agente antimicrobico	Concentrazione	Coronavirus testati	Riferimenti
etanolo	70%	HCoV-229E, MHV-2, MHV-N, CCV, TGEV	[4,6,7]
Ipoclorito di sodio	0.1–0.5% 0.05–0.1%	HCoV-229E SARS-CoV	[6] [5]
Iodio povidone	10% (1% di iodio)	HCoV-229E	[6]
glutaraldeide	2%	HCoV-229E	[6]
isopropanolo	50%	MHV-2, MHV-N, CCV	[7]
Benzalconio cloruro	0.05%	MHV-2, MHV-N, CCV	[7]
Clorito di sodio	0.23%	MHV-2, MHV-N, CCV	[7]
Formaldeide	0.7%	MHV-2, MHV-N, CCV	[7]

Inattivazione di coronavirus da parte di agenti biocidi nei test di sospensione

Etanolo (78–95%), 2-propanolo (70–100%), la combinazione del 45% di 2-propanolo con 30% di 1-propanolo, glutardialdeide (0,5–2,5%), formaldeide (0,7-1%) e povidone lo iodio (0,23-7,5%) ha facilmente inattivato l’ infettività del coronavirus di circa 4 log10 o più. (Tabella II).
L’ipoclorito di sodio ha richiesto una concentrazione minima di almeno lo 0,21% per essere efficace.
Il perossido di idrogeno si è rivelato efficace con una concentrazione dello 0,5% e un tempo di incubazione di 1 minuto.
I dati ottenuti con benzalconio cloruro a tempi di contatto ragionevoli erano contrastanti. Entro 10 minuti una concentrazione dello 0,2% non ha rivelato alcuna efficacia contro il coronavirus mentre una concentrazione dello 0,05% era abbastanza efficace. Lo 0,02% di clorexidina digluconato era sostanzialmente inefficace (Tabella II).

Tabella II – Inattivazione di coronavirus da parte di diversi tipi di biocidi nei test di sospensione

Agente biocida	Concentrazione	Virus	Filtrare / isolare	Tempo di esposizione	Riduzione dell’infettività virale (log ₁₀ )	Riferimento
etanolo	95%	SARS	Isolare FFM-1	30 s	≥ 5.5	[29]
85%	SARS	Isolare FFM-1	30 s	≥ 5.5	[29]
80%	SARS	Isolare FFM-1	30 s	≥ 4.3	[29]
80%	MERS	Sforzo EMC	30 s	> 4.0	[14]
78%	SARS	Isolare FFM-1	30 s	≥ 5.0	[28]
70%	MHV	Varietà MHV-2 e MHV-N	10 min	> 3.9	[30]
70%	CCV	Varietà I-71	10 min	> 3.3	[30]
2-propanolo	100%	SARS	Isolare FFM-1	30 s	≥ 3.3	[28]
75%	SARS	Isolare FFM-1	30 s	≥ 4.0	[14]
75%	MERS	Sforzo EMC	30 s	≥ 4.0	[14]
70%	SARS	Isolare FFM-1	30 s	≥ 3.3	[28]
50%	MHV	Varietà MHV-2 e MHV-N	10 min	> 3.7	[30]
50%	CCV	Varietà I-71	10 min	> 3.7	[30]
2-propanolo e 1-propanolo	45% e 30%	SARS	Isolare FFM-1	30 s	≥ 4.3	[29]
SARS	Isolare FFM-1	30 s	≥ 2.8	[28]
Benzalconio cloruro	0.2%	HCoV	ATCC VR-759 (varietà OC43)	10 min	0.0	[31]
0.05%	MHV	Varietà MHV-2 e MHV-N	10 min	> 3.7	[30]
0.05%	CCV	Varietà I-71	10 min	> 3.7	[30]
0.00175%	CCV	Varietà S378	3 d	3.0	[32]
Didecyldimethyl ammonium chloride	0.0025%	CCV	Varietà S378	3 d	> 4.0	[32]
Digluconato di clorexidina	0.02%	MHV	Varietà MHV-2 e MHV-N	10 min	0.7–0.8	[30]
0.02%	CCV	Varietà I-71	10 min	0.3	[30]
Ipoclorito di sodio	0.21%	MHV	Varietà MHV-1	30 s	≥ 4.0	[33]
0.01%	MHV	Varietà MHV-2 e MHV-N	10 min	2.3–2.8	[30]
0.01%	CCV	Varietà I-71	10 min	1.1	[30]
0.001%	MHV	Varietà MHV-2 e MHV-N	10 min	0.3–0.6	[30]
0.001%	CCV	Varietà I-71	10 min	0.9	[30]
Perossido di idrogeno	0.5%	HCoV	Varietà 229E	1 min	> 4.0	[34]
Formaldeide	1%	SARS	Isolare FFM-1	2 min	> 3.0	[28]
0.7%	SARS	Isolare FFM-1	2 min	> 3.0	[28]
0.7%	MHV		10 min	> 3.5	[30]
0.7%	CCV	Varietà I-71	10 min	> 3.7	[30]
0.009%	CCV		24 h	> 4.0	[35]
glutaraldeide	2.5%	SARS	Varietà di Hanoi	5 min	> 4.0	[36]
0.5%	SARS	Isolare FFM-1	2 min	> 4.0	[28]
Iodio povidone	7.5%	MERS	Isolate HCoV-EMC/2012	15 s	4.6	[37]
4%	MERS	Isolate HCoV-EMC/2012	15 s	5.0	[37]
1%	SARS	Varietà di Hanoi	1 min	> 4.0	[36]
1%	MERS	Isolate HCoV-EMC/2012	15 s	4.3	[37]
0.47%	SARS	Varietà di Hanoi	1 min	3.8	[36]
0.25%	SARS	Varietà di Hanoi	1 min	> 4.0	[36]
0.23%	SARS	Varietà di Hanoi	1 min	> 4.0	[36]
0.23%	SARS	Isolare FFM-1	15 s	≥ 4.4	[38]
0.23%	MERS	Isolate HCoV-EMC/2012	15 s	≥ 4.4	[38]

Inattivazione di coronavirus da parte di agenti biocidi nei test sui portatori

L’etanolo a concentrazioni tra il 62% e il 71% ha ridotto l’infettività del coronavirus entro 1 minuto di esposizione di 2,0–4,0 log10.

Anche le concentrazioni di 0,1-0,5% di ipoclorito di sodio e 2% di glutardialdeide erano abbastanza efficaci con una riduzione> 3,0 log10 del titolo virale.

Al contrario, lo 0,04% di benzalconio cloruro, lo 0,06% di ipoclorito di sodio e lo 0,55% di ortofalaldeide erano meno efficaci (Tabella III).

Tabella III – Inattivazione di coronavirus da parte di diversi tipi di biocidi nei test sui portatori

Agente biocida	Concentrazione	Virus	Filtrare / isolare	Volume / material	Carico organico	Tempo di esposizione	Riduzione dell’infettività virale (log ₁₀ )	Riferimento
etanolo	71%	TGEV	Sconosciuto	50 μl / acciaio inossidabile	Nessuna	1 min	3.5	[39]
71%	MHV	Sconosciuto	50 μl / acciaio inossidabile	Nessuna	1 min	2.0	[39]
70%	TGEV	Sconosciuto	50 μl / acciaio inossidabile	Nessuna	1 min	3.2	[39]
70%	MHV	Sconosciuto	50 μl / acciaio inossidabile	Nessuna	1 min	3.9	[39]
70%	HCoV	Varietà 229E	20 μl / acciaio inossidabile	5% siero	1 min	> 3.0	[40]
62%	TGEV	Sconosciuto	50 μl / acciaio inossidabile	Nessuna	1 min	4.0	[39]
62%	MHV	Sconosciuto	50 μl / acciaio inossidabile	Nessuna	1 min	2.7	[39]
cloruro di benzalconio	0.04%	HCoV	Varietà 229E	20 μl / acciaio inossidabile	5% siero	1 min	<3.0	[40]
Ipoclorito di sodio	0.5%	HCoV	Varietà 229E	20 μl / acciaio inossidabile	5% siero	1 min	> 3.0	[40]
0.1%	HCoV	Varietà 229E	20 μl / acciaio inossidabile	5% siero	1 min	> 3.0	[40]
0.06%	TGEV	Sconosciuto	50 μl / acciaio inossidabile	Nessuna	1 min	0.4	[39]
0.06%	MHV	Sconosciuto	50 μl / acciaio inossidabile	Nessuna	1 min	0.6	[39]
0.01%	HCoV	Varietà 229E	20 μl / acciaio inossidabile	5% siero	1 min	<3.0	[40]
glutaraldeide	2%	HCoV	Varietà 229E	20 μl / acciaio inossidabile	5% siero	1 min	> 3.0	[40]
Orto-ftalaldeide	0.55%	TGEV	Sconosciuto	50 μl / acciaio inossidabile	Nessuna	1 min	2.3	[39]
0.55%	MHV	Sconosciuto	50 μl / acciaio inossidabile	Nessuna	1 min	1.7	[39]
Perossido di idrogeno	Vapore di concentrazione sconosciuta	TGEV	Ceppo Purdue tipo 1	20 μl / acciaio inossidabile	Nessuna	2-3 ore	4.9–5.3*	[41]

TGEV = virus della gastroenterite trasmissibile; MHV = virus dell’epatite di topo; HCoV = coronavirus umano; * a seconda del volume di perossido di idrogeno iniettato.

Approcci di pulizia

La pulizia deve essere eseguita utilizzando i dispositivi di protezione individuale (DPI) adeguati. È necessario seguire la corretta indossatura e levata dei DPI; ulteriori informazioni sulle procedure di indossamento e levata sono reperibili nel documento tecnico ECDC “Uso sicuro dei dispositivi di protezione individuale nel trattamento delle malattie infettive ad alto rischio” [8].

I DPI monouso devono essere trattati come materiale potenzialmente infettivo e smaltiti in conformità alle norme nazionali.

Si consiglia l’uso di attrezzature per la pulizia usa e getta o dedicate; i DPI non monouso devono essere decontaminati utilizzando i prodotti disponibili (ad es. ipoclorito di sodio allo 0,1% o etanolo al 70%).

Quando si utilizzano altri prodotti chimici, è necessario seguire le raccomandazioni del produttore e preparare e applicare i prodotti secondo questi.

Quando si utilizzano prodotti chimici per la pulizia, è importante mantenere la struttura ventilata (ad es. Aprendo le finestre) al fine di proteggere la salute del personale addetto alle pulizie.

I seguenti articoli DPI sono suggeriti per l’uso quando le strutture di pulizia potrebbero essere contaminate da SARS-CoV-2:

Respiratori con filtro (FFP) classe 2 o 3 (FFP2 o FFP3)
Occhiali o visiera
Abito monouso resistente all’acqua a maniche lunghe
Guanti monouso.

Anche tutte le aree toccate di frequente, come tutte le superfici accessibili di pareti e finestre, il water e le superfici del bagno, devono essere pulite con cura.

Tutti i tessuti (ad es. Lenzuola, tende, ecc.) Devono essere lavati con un ciclo di acqua calda (90 ° C) e aggiungendo detersivo per bucato.

Se non è possibile utilizzare un ciclo dell’acqua calda a causa delle caratteristiche dei tessuti, è necessario aggiungere sostanze chimiche specifiche durante il lavaggio dei tessuti (ad es. Candeggina o prodotti per il bucato contenenti ipoclorito di sodio o prodotti per la decontaminazione sviluppati appositamente per l’uso sui tessuti).

References

4. Hulkower RL, Casanova LM, Rutala WA, Weber DJ, Sobsey MD. Inactivation of surrogate coronaviruses on hard surfaces by health care germicides. American journal of infection control. 2011;39(5):401-7.

5. Lai MYY, Cheng PKC, Lim WWL. Survival of severe acute respiratory syndrome coronavirus. Clinical Infectious Diseases. 2005;41(7):e67-e71.

6. Sattar SA, Springthorpe VS, Karim Y, Loro P. Chemical disinfection of non-porous inanimate surfaces experimentally contaminated with four human pathogenic viruses. Epidemiology & Infection. 1989;102(3):493- 505.

7. Saknimit M, Inatsuki I, Sugiyama Y, Yagami K. Virucidal efficacy of physico-chemical treatments against coronaviruses and parvoviruses of laboratory animals. Experimental animals. 1988;37(3):341-5.

8. European Centre for Disease Prevention and Control (ECDC). Safe use of personal protective equipment in the treatment of infectious diseases of high consequence. Stockholm: ECDC; 2014. Available from: https://www.ecdc.europa.eu/sites/default/files/media/en/publications/Publications/safe-use-of-ppe.pdf.

21. van Doremalen, N., Bushmaker, T., and Munster, V.J. Stability of Middle East respiratory syndrome coronavirus (MERS-CoV) under different environmental conditions. Euro Surveill. 2013; 18

22. Casanova, L.M., Jeon, S., Rutala, W.A., Weber, D.J., and Sobsey, M.D. Effects of air temperature and relative humidity on coronavirus survival on surfaces. Appl Environ Microbiol. 2010; 76: 2712–2717

23. Warnes, S.L., Little, Z.R., and Keevil, C.W. Human Coronavirus 229E Remains Infectious on Common Touch Surface Materials. mBio. 2015; 6: e01697–15

24. Sizun, J., Yu, M.W., and Talbot, P.J. Survival of human coronaviruses 229E and OC43 in suspension and after drying on surfaces: a possible source of hospital-acquired infections. J Hosp Infect. 2000; 46: 55–60

25. Duan, S.M., Zhao, X.S., Wen, R.F., Huang, J.J., Pi, G.H., Zhang, S.X. et al. Stability of SARS coronavirus in human specimens and environment and its sensitivity to heating and UV irradiation. Biomed Environ Sci. 2003; 16: 246–255

26. Lai, M.Y., Cheng, P.K., and Lim, W.W. Survival of severe acute respiratory syndrome coronavirus. Clin Infect Dis. 2005; 41: e67–e71

27. Chan, K.H., Peiris, J.S., Lam, S.Y., Poon, L.L., Yuen, K.Y., and Seto, W.H. The Effects of Temperature and Relative Humidity on the Viability of the SARS Coronavirus. Adv Virol. 2011; : 734690

28. Rabenau, H.F., Cinatl, J., Morgenstern, B., Bauer, G., Preiser, W., and Doerr, H.W. Stability and inactivation of SARS coronavirus. Med Microbiol Immunol. 2005; 194: 1–6

29. Rabenau, H.F., Kampf, G., Cinatl, J., and Doerr, H.W. Efficacy of various disinfectants against SARS coronavirus. J Hosp Infect. 2005; 61: 107–111

30. Saknimit, M., Inatsuki, I., Sugiyama, Y., and Yagami, K. Virucidal efficacy of physico-chemical treatments against coronaviruses and parvoviruses of laboratory animals. Jikken Dobutsu Exp Anim. 1988; 37: 341–345

31. Wood, A. and Payne, D. The action of three antiseptics/disinfectants against enveloped and non-enveloped viruses. J Hosp Infect. 1998; 38: 283-295

32. Pratelli, A. Action of disinfectants on canine coronavirus replication in vitro. Zoonoses Publ Health. 2007; 54: 383–386

33. Dellanno, C., Vega, Q., and Boesenberg, D. The antiviral action of common household disinfectants and antiseptics against murine hepatitis virus, a potential surrogate for SARS coronavirus. Am J Infect Control. 2009; 37: 649–652

34. Omidbakhsh, N. and Sattar, S.A. Broad-spectrum microbicidal activity, toxicologic assessment, and materials compatibility of a new generation of accelerated hydrogen peroxide-based environmental surface disinfectant. Am J Infect Control. 2006; 34: 251–257

35. Pratelli, A. Canine coronavirus inactivation with physical and chemical agents. Vet J (London, England : 1997). 2008; 177: 71–79

36. Kariwa, H., Fujii, N., and Takashima, I. Inactivation of SARS coronavirus by means of povidone-iodine, physical conditions and chemical reagents. Dermatol (Basel, Switzerland). 2006; 212: 119–123

37. Eggers, M., Eickmann, M., and Zorn, J. Rapid and Effective Virucidal Activity of Povidone-Iodine Products Against Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus (MERS-CoV) and Modified Vaccinia Virus Ankara (MVA). Infect Dis Ther. 2015; 4: 491–501

38. Eggers, M., Koburger-Janssen, T., Eickmann, M., and Zorn, J. In Vitro Bactericidal and Virucidal Efficacy of Povidone-Iodine Gargle/Mouthwash Against Respiratory and Oral Tract Pathogens. Infect Dis Ther. 2018; 7: 249–259

39. Hulkower, R.L., Casanova, L.M., Rutala, W.A., Weber, D.J., and Sobsey, M.D. Inactivation of surrogate coronaviruses on hard surfaces by health care germicides. Am J Infect Control. 2011; 39: 401–407

40. Sattar, S.A., Springthorpe, V.S., Karim, Y., and Loro, P. Chemical disinfection of non-porous inanimate surfaces experimentally contaminated with four human pathogenic viruses. Epidemiol Infect. 1989; 102: 493–505

41. Goyal, S.M., Chander, Y., Yezli, S., and Otter, J.A. Evaluating the virucidal efficacy of hydrogen peroxide vapour. J Hosp Infect. 2014; 86: 255–259